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Pérez Cárdenas, J. E., Aricapa Giraldo, H. J., Martínez Restrepo, N. A., & Cifuentes Villaquirán, G. A. (2010). Behavior of IgM and IgG levels in pregnant sows in herds of the coffeegrowing region of colombia vaccined against Leptospira with a pentavalent vaccine. Biosalud, 9(1), 17–33. Retrieved from https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/biosalud/article/view/5510

Authors

Jorge Enrique Pérez Cárdenas
Universidad de Caldas. Manizales
labmicro@ucaldas.edu.co
Héctor Jaime Aricapa Giraldo
Universidad de Caldas. Manizales
labmicro@ucaldas.edu.co
Nicole Andrea Martínez Restrepo
Universidad de Caldas. Manizales
labmicro@ucaldas.edu.co
Gustavo Adolfo Cifuentes Villaquirán
Universidad de Caldas. Manizales
labmicro@ucaldas.edu.co

Abstract

The goal of this study was to determine the levels of postvaccinal antibodies against several serovars of Leptospira in 78 sows in two different gestation moments (day 90 to 95: moment 1, and day 110 to 114: moment 2), using the Micro agglutination (MAT) and Indirect Immunofluorescence (IFI) techniques. Each serum was tested for six serovars of Leptospira (Canicola, Hardjo bovis, Pomona, Grippotyphosa, Icterohaemorrhagiae and Bratislava) donated by the Center of Diagnostics of the Instituto Colombiano Agropecuario (ICA) in Manizales-Caldas-Colombia. The results showed a 59% positive sera using MAT in moment one and a 17% in moment two, with Icterohaemorrhagiae and Hardjo bovis as the most prevalent. By means of the IFI technique 100% of sera were positive in both moments, for at least one of the serovars tested, with titers between 1:64 and 1:512 in the first moment and a strong decrease or absence of the titers in the second moment; the most prevalent serovars for IFI were Icterohaemorrhagiae and Canicola. In conclusion, this vaccine has a low protection capacity since an increase in the number of seropositive sows with IgM was observed against some serovars of Leptospira in the second moment, as well as an increase in the levels of IgG against Icterohaemorrhagiae in the second moment, and its low protection capacity in offspring in their first days of life associated with a decrease of the antibodies at the end of the gestation.

Bolin CA, Thiermann AB, Handsaker AL, Foley JW. Effect of vaccination with a pentavalent leptospiral vaccine on Leptospira interrogans serovar Hardjo type hardjo-bovis infection of pregnant cattle. Am J Vet Res 1989;50:161-165.

Bolin CA, Zuerner RL, Trueba G. Effect of vaccination with a pentavalent leptospiral vaccine containing Leptospira interrogans serovar Hardjo type hardjo-bovis on type hardjo-bovis infection of cattle. Am J Vet Res 1989;50:2004-2008.

Dammert N. Leptospirosis: una revisión bibliográfica. [Internet]. Disponible en: http://www.sapuvetnet.org/Pdf%20Files/Monografia_ leptospira.pdf. Consultado Octubre de 2008.

Hernández P, Escobar M, Rodríguez M. Leptospirosis: una zoonosis que afecta principalmente a humanos y bovinos. Revista de la Universidad de La Salle 2001;32:75-89.w

Acha NP, Szyfres B. Leptospirosis. En: Acha NP, Szyfres B, eds. Zoonosis y enfermedades transmisibles comunes al hombre y a los animales. 3a ed. Washington: Organización Panamericana de la Salud; 2003. p. 175-184.

Silva RF. Leptospirosis canina. Seminario de Zoonosis Emergentes Prevención y Perspectivas. Manizales 29 de Febrero de 2004. Memorias del seminario de Zoonosis Emergentes, Prevención y Perspectivas. Manizales; 2004. p. 45-65.

Cisneros MA, Moles LP, Gavaldon D, Rojas N, Torres JI. Serología diagnóstica de leptospirosis porcina en México 1995-2000. Revista Cubana de Medicina Tropical 2002;54:28-31.

Morilla A. Leptospirosis. En: Morilla A, ed. Manual para el control de las enfermedades infecciosas del cerdo. 2a ed. México: Editorial El Manual Moderno; 2005. p. 221-229.

Torres J. Situación de la leptospirosis porcina y bovina en el estado de Yucatán. [Internet]. Disponible en: http://www.conasamexico.org/mesa9 Situaci%C3%B3n%20de%20la%20leptospirosis.pdf. Consultado Octubre de 2008.

Orrego A, Giraldo G, Bohórquez A, Escobar J, Quiceno J, Ríos B, et al. Aproximación a la prevalencia serológica real de la leptospirosis en porcinos-cría. Revista CORPOICA 2001;3:11-16.

Myers DM. Prueba de aglutinación microscópica. En: Myers DM, ed. Manual de métodos para el diagnóstico de laboratorio de la leptospirosis, nota técnica. Centro Panamericano de Zoonosis; 1985. p. 24-26.

Delgado A, Amich S, Prieto S, Salve M. Pruebas de Sensibilidad a los Antimicrobianos. En: Delgado A, Amich S, Prieto S, Salve M, eds. Laboratorio Clínico Microbiología. Madrid: Interamericana McGraw-Hill; 1994. p. 158-159.

Pierluigie EB, Richard CT. Inmunoflorescence and inmunoenzyme procedures. In: Pierluigie EB, Richard CT, eds. Methods in Immunodiagnosis. 2 ed. New York: Editorial A. Wiley Medical publication; 1980. p. 161-202.

Pfeiffer DU. Analytical epidemiology. In: Pfeiffer, DU. Veterinary Epidemiology: An Introduction. [Online]. [Cited 01 may, 2010]. Available from World Wide Web: http://www2.vetmed.wisc.edu/education/courses/epi/Pfeiffer.pdf

Medina A, Negrete L, Almentero C. Prevalencia de leptospirosis porcina en el municipio de Circasia (Quindío). MVZ-Córdoba 2003;8:281.

Ramos A, Souza G, Lilenbaum W. Influence of leptospirosis on reproductive performance of sows in Brazil. Magazine Theriogenology 2006;66:1021-1025.

Tizard I. Vacunación y vacunas. En: TIZARD I, ed. Inmunología Veterinaria. 6a ed. México: Editorial MacGraw-Hill / Interamericana editores; 2002. p. 254-273.

Giraldo G, Orrego A, Betancurth AM. Los roedores como reservorios de Leptospiras en planteles porcinos de la zona central cafetera de Colombia. Arch Med Vet 2002;34:69-78.

Giraldo G, Orrego A. Leptospirosis. Las aguas de la explotación porcina como vehículo de la Leptospira, en la zona central cafetera de Colombia. Arch Med Vet 2002;34:79-87.

Orrego A, Giraldo G, Ríos B, Valencia PA. Leptospirosis en personas de riesgo de quince explotaciones porcinas y de la central de sacrificio de Manizales, Colombia. Arch Med Vet 2003;35:205-213.

Guerrero JH, Orozco YJ, Aricapa HJ, Pérez JE. Aplicación de la Técnica de Inmunofluorescencia Indirecta (IFI), para la Detección de Anticuerpos contra Leptospira. Trabajo para optar al título de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Universidad de Caldas, Manizales, Colombia; 2004.

Cabrera IC, Rivera K, Aricapa HJ, Pérez JE. Valoración de la Respuesta de Anticuerpos Tipo IgM e IgG Frente a Leptospira en Bovinos. Trabajo para optar al título de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Universidad de Caldas, Manizales, Colombia; 2007.

Agudelo P, Restrepo M, Lotero MA. Evaluación de la prueba de inmunofluorescencia indirecta para el diagnóstico de Leptospirosis humana. Biomédica 2006;26:216-223.

Silva RF, Riedemann S. Seroprevalencia de leptospirosis canina en perros atendidos en clínicas veterinarias, mediante aglutinación microscópica y comparación con las técnicas de aislamiento e inmunofluorescencia indirecta. Arch Med Vet 2007;39:269-274.

Brown RA, Blumerman S, Gay C, Bolin C, Duby R, Baldwin CL. Comparison of three different leptospiral vaccines for induction of a type 1 immune response to Leptosprira borgpetersenii serovar Hardjo. Vaccines 2003;21:4448-4458.

Klaasen HLBM, Molkenboer MJCH, Vrijenhoek MP, Kaashoek MJ. Duration of immunity in dogs vaccinated against leptospirosis with a bivalent inactivated vaccine. Veterinary Microbiology 2003;95:121-132.

MARTINS S, F.R; PNHERO, S.R; ITO, F.H; MORAES, Z.M; GONÇALES, A.P; SANTOS de A, S; BERNARDI, F; RODRIGUEZ C, S; ARRUDA V, S. Evaluation of colostral immunity in swine with commercial antileptospira polyvalent whole-bacteria vaccine. Comparative Immunology, Microbiology & Infectious Diseases, 2008. 31:327–335.

Adler B, de la Peña M. A. Leptospira and leptospirosis. Veterinary Microbiology; 2009. In Press, doi:10.1016/j.vetmic.2009.03.012.

Srivastava SK. Prospects of developing leptospiral vaccines for animals. Indian Journal of Medical Microbiology 2006;34:331-336.

Martins S. FR, Pinheiro SR, Morais ZM, Gonçales AP, Santos de Azevedo S, Bernardi F, Rodriguez C. S, Vasconcellos SA. Comparison of agglutinating and neutralizing antibodies to serovar Hardho in Sows immunized with two comercial whole cultura polivalent anti-leptospira bacterins. Brazilian Journal of Microbiology 2008;39:484-488.

Christopher WL, Adler B, Faine S. Immunogenicity of Leptospiral vaccines grown in protein-free medium. Journal Medical Microbiology 1982;15:493-501.

Felix SR, Silva EF, Jouglard SDD, Hartmann DM, Grassmann AA, Dellagostin OA. Leptospirosis Vaccine: search for subunit candidates. Procedia in Vaccinology 2009;1:110-114.

Schreiber P, Martin V, Najbar W, Sanquer A, Gueguen S, Lebreux B. Prevention of renal infection and urinary shedding in dogs by Leptospira vaccination. Veterinary Microbiology 2005;108:113-118.

Srivastava SK. Prospects of developing leptospiral vaccines for animals. Indian Journal of Medical Microbiology 2006;24:331-336.

The Leptospirosis Information Center. The Leptospira bacterium. Bacteriológical information. [On line]. [Cited, 02 may 2010]. Available From Word Wide Web: http://www.leptospirosis.org/bacteria/serovars.php

Leptospira Molecular Biology, Institut Pasteur. What´s Leptospirosis. [On line]. [Cited, 02 may 2010]. Available From Word Wide Web: http://www.pasteur.fr/recherche/Leptospira/LepE.html

The Leptospirosis Information Center. Leptospirosis in animals-Species at risk. [On line]. [Cited, 02 may 2010]. Available From Word Wide Web: http://www.leptospirosis.org/topic.php?t=47&f=0

World Health Organization, International Leptospire Society. Annex 9: DNA- Based Classification. In: World Health Organization, International Leptospire Society, eds. Human Leptospirosis: Guidance for Diagnosis, Surveillance and Control. World Health Organization; 2003. p. 59-62.

Ko AI, Goarant C, Picardeau M. Leptospira: the dawn of the molecular genetics for an emerging zoonotic pathogen. Nature Reviews Microbiological 2009;7:736-746.

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