Manejo integrado de nematodos fitoparásitos en almácigos de plátano dominico hartón (musa aab simmonds)

Abstract

Abstract

As a result of feeding of Radopholus similis, both roots and corms are damaged and this results in plant growth deficiency and yield losses up to 80%. Therefore, the objective of this study was to determine the effect of the integration of management practices such as corms sanitary cleaning and biological cleaning such as Arbuscular mycorrhizae (AM), Purpureocillium lilacinum and Bacillus subtilis on the development of Dominico Hartón plantain seedlings and phytoparasitic nematods populations. The experiment was conducted at the Universidad de Caldas Montelindo farm located at 1,010 m.a.s.l.., average temperature 23ºC and 1,800 mm rainfall. The treatments were assigned in a completely randomized block design, each one with 20 corms (experimental units) planted in 5 kg black plastic bags as follows: corms with sanitary seed cleaning without application of products (T1); corms with sanitary cleaning + AM (T2); corms with sanitary cleaning + P. lilacinum (T3); corms with sanitary cleaning + B. subtilis (T4); and corms with sanitary cleaning + AM + P. lilacinum + B. subtilis (T5). The described procedure was also applied to traditional corms planted in soil without sterilization (T6 to T10, respectively). In the treatments established in sterilized soil and cleaned corms, there was not presence of individuals of the main plant parasitic nematodes of plantain, such as, Radopholus, Meloidogyne and Helicotylenchus. Treatments with infested soil with nematodes and cleaned corms, showed a reduction in plant parasitic nematodes up to 64% compared with the initial population, although they also showed lower amount of nematodes than the control population. From these treatments, the one that had the lowest population of nematodes was the T10 (Infested soil + cleaned corms + AM + P. lilacinum + B. subtilis) with an average population of 472 phytoparasitic nematodes/100 g of soil). The integration of all management practices resulted in the most efficient way to control the plant phytoparasitic nematodes of plantain, with or without soil sterilization, and the corms sanitary cleanness did not affect either the root development or the aerial parts of the seedlings, since there were not significant differences with respect to the treatments using traditional corms.8

Keywords:

Limpieza sanitaria de cormos

Radopholus similis

Micorrizas Arbusculares

Purpureocillium lilacinum

Bacilus subtilis

Corms sanitary cleanness

Radopholus similis

Arbuscular Mycorrhizae

Purpureocillium lilacinum

Bacilus subtilis

References

 Agrios, G. (2005). Plant pathology. 5 ed. Nueva York: Elsevier Academic Press.

 Agronet. (2012). Boletines estadísticos. Encuesta Nacional Agropecuaria. Recuperado de http://www.agronet.gov.co/www/htm3b/ReportesAjax/VerReporte.asp x

 Araya, M., Centeno, M. & Carrillo, W. (1995). Densidad poblacional y frecuencia de los nematodos parásitos de banano (Musa AAA) en nueve cantones de Costa Rica. CORBANA, 20(43), 6-11.

 Becerra, J. F., Castaño-Zapata, J. & Villegas-Estrada, B. (2010). Efecto de la micorrización sobre el manejo de nematodos en plántulas de plátano híbrido “FHIA-20AAB”. Agronomía, 18(1), 7-18.

 Bolaños, M. (2011). Mejoramiento de la sanidad y competitividad del cultivo del plátano, mediante el desarrollo de nuevas estrategias del manejo del suelo y la nutrición. Informe técnico final. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria - CORPOICA.

 Cano, M. A. (2001). Efecto de Glomus fasciculatum, Glomus fistulosum y Glomus manihotis en el crecimiento, desarrollo y nutrición de plantas de plátano y banano. Trabajo de grado para optar el título de Ingeniero agrónomo. Corporación Universitaria de Ciencias Aplicadas y Ambientales “U.D.C.A”, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Bogotá, D.C.

 Castrillón, C., Botero, M. J., Urrea, C. F., Cardona, J. E., Zuluaga, L. E., Morales, H. & Alzate, G. (2002). Manejo integrado de nematodos parásitos del plátano, con énfasis en microbiológicos. En Acorbat. Memorias XV reunión. Realizada en Cartagena de Indias, 27 de octubre - 02 de noviembre.

 Chaves, N. (2007). Utilización de bacterias y hongos endofíticos para el control biológico del nematodo Barrenador Radopholus similis (Cobb) Thorn. Tesis sometida a consideración de la Escuela de Posgrado, Programa de Educación para el Desarrollo y la Conservación del Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza como requisito para optar por el grado de Magister Scientiae en Agricultura Ecológica.Turrialba - Costa Rica.

 Croshier, R., Montecinos, G., Jiménez, M. & Gallo, P. (1984). Efectividad de Paecilomyces lilacinum Thom. Samson, en el control del nematodo cecidógeno Meloidogyne javanica (Chitwood), 1949. IDESIA, 8, 27-31.

 Cruz, J. C., Sánchez, M. & Sieverding, E. (1989). Estudio de la simbiosis micorriza vesículo-arbuscular en el cultivo del café Coffea arabica Var. Caturra. Fitopatología Colombiana, 13(2), 56-64.

 Cuervo, J. (2010). Aislamiento y Caracterización de Bacillus spp. como fijadores biológicos de nitrógeno y solubilizadores de fosfatos en dos muestras de biofertilizantes comerciales. Pontificia Universidad Javeriana, acultad de Ciencias Básicas, Bogotá, Colombia.

 Díaz, M. J., Rivera, C. M. & Durán, L. (2007). Cómo proteger de las plagas del suelo los cormos-semilla de plátano y banano. 1a ed. La Lima, Cortés, Honduras: FHIA, Departamento de Protección Vegetal.

 Egamberdiyeva, D. (2007). The effect of plant growth promoting bacteria on growth and nutrient uptake of maize in two different soils. Applied Soil Ecol., 36, 184-189.

 Espinel, C., Martínez, H., Peña, Y. 2006. La cadena del plátano en Colombia. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Documento de trabajo No. 12.

 Flores, P. R. (2009). Control del nematodo Meloidogyne sp. en el cultivo de rosa (Rosa sp.) con aplicación del hongo Paecilomyces lilacinum y materia orgánica en la zona de Tabacundo provincia de Pichincha. Universidad Técnica de Babahoyo. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Escuela de Ingeniería Agronómica.

 Fogain, R. (2000). Effect of Radopholus similis on plant growth and yield of plantain (Musa AAB). Nematology, 2, 129-133.

 Funica. (2009). Guía. Uso y manejo de Paecilomyces lilacinum en el control de nematodos de nematodos. Nicaragua.

 Gañán, L., Bolaños-Benavides, M. & Asakawa, N. (2011). Efecto de la micorrización sobre el crecimiento de plántulas de plátano en sustrato con y sin la presencia de nematodos fitoparásitos. Acta Agronómica, 60(4), 297-305.

 González, C., Aristizábal, M. & Aristizábal, J. C. (2007). Dinámica poblacional de nematodos fitopatógenos en plátano (Musa AAB) dominico hartón. Agronomía, 15(2), 25-31.

 González-Cardona, C. & Guzmán-Piedrahita, O. (2011). Efecto de la limpieza sanitaria de cormos y la fertilización orgánica sobre el crecimiento de plantas de Dominico Hartón (Musa AAB Simmonds) y su relación con nematodos fitoparásitos. Agronomía, 19(1), 42-56.

 Gowen, S. & Quénéhervé, P. (1990). Nematode of bananas, plantains and abaca. In Luc, M., Sikora, R. & Bridge, J. (Eds.). Plant Parasitic Nematodes in Subtropical and Tropical Agriculture (pp. 431-460). Londres: CAB International.

 Gowen, S., Quénéhervé, P. & Fogain, R. (2005). Nematodes Parasites of Bananas and Plantains. In In Luc, M., Sikora, R. & Bridge, J. (Eds.). Plant Parasitic Nematodes in Subtropical and Tropical Agriculture. (pp. 611-643).
London, UK: CABI Publishing.

 Guzmán, O. & Castaño, J. (2004). Reconocimiento de nematodos fitopatógenos en plátano Dominico Hartón (Musa AAB Simmonds), África, FHIA-20 y FHIA-21 en la granja Montelindo, municipio de Palestina (Caldas), Colombia. Revista de la Académica Colombiana de Ciencias Exactas Físicas y Naturales, 28(107), 295-301.

 Guzmán, O., Castaño, J. & Villegas, B. (2012). Efecto de la limpieza sanitaria de cormos de plátano (Musa AAB Simmonds) sobre nematodos fitoparásitos. Revista U.D.C.A. Actualidad & Divulgación Científica, 15(1),87-95.

 Guzmán, O. & Rivillas, C. (2007). Relación de Glomus manihotis y G.fasciculatum con el crecimiento de plantas de café y la severidad de la Mancha de hierro. Revista del Centro Nacional de Investigaciones de Café CENICAFÉ, 58(3), 236-251.

 Hauser, S. (2003). Plantain root nematodes: kill them simple. HFC - Soil Physics - Agronomy International Institute of Tropical Agriculture. IITA. Recuperado de http://invam.caf.wvu.edu/Myc_Info/Taxonomy/taxonomy.htm

 Jaizme, M. C. & Rodríguez, A. S. (2004). Uso de Micorrizas en banano: Logros y perspectivas Mycorrhizae and banana: Currents achievements and perspectives. XVI Reunión Internacional ACORBAT. p. 143-160.

 Jenkins, W. R. (1964). A rapid centrifugal flotation technique for separating nematodes from soil. Plant Disease Reporter, 48(9), 692.

 Jones, D. R. (1996). Opportunities for conventional breeding for resistance to nematodes of banana and plantain. In Frison, E. A., Horry, J. P. & De Waele, D. (Eds.). New frontiers in resistance breeding for nematode, Fusarium and Sigatoka (pp. 13-24). Proceedings, Kuala Lumpur, Malaysia.

 Kloepper, J. W., Mahaffee, W., McInroy, J. A. & Backman, P. A. (1991). Comparative analysis of methods for recovering plant growth-promoting rhizobacteria from roots. Can. J. Microbiol., 37, 953-957.

 Koneman, E. W. (2001). Diagnóstico microbiológico: Texto y atlas de color. Quinta Edición. Buenos Aires: Editorial Médica Panamericana.

 Loos, C. A. (1961). Eradication of the burrowing nematode, Radopholus similis from bananas. Plant Disease Reporter, 45(6), 457-461.

 Loredo, C., López, L. & Espinosa, D. (2004). Bacterias promotoras del crecimiento vegetal asociadas con gramíneas. Revista TERRA Latinoamericana, 22(2), 224-239.

 Luangsa-Ard, J., Houbraken, J., Van Doorn, T., Hong, S. B., Borman, A.M., Hywel-Jones, N. L. & samson, R. A. (2011). Purpureocillium, a new genus for the medically important Paecilomyces lilacinus. FEMS Microbiology Letters, 321(2), 141-149.

 Meredith, J. (1973). Algunos métodos de campo y laboratorio para trabajar con nematodos. Maracaibo, Venezuela.

 Moens, T., Araya, M., Swennen, R. & Waeles, D. (2003). Biodegradación acelerada de nematicidas en Musa. En Manejo convencional y alternativo de la Sigatoka negra, nematodos y otras plagas asociadas al cultivo de Musáceas en los trópicos (pp. 105-118). Actas del Taller “Manejo convencional y alternativo de la Sigatoka negra, nematodos y otras plagas asociadas al cultivo de Musáceas”, celebrado en Guayaquil, Ecuador, 11-13 de agosto. Galileo Rivas y Franklin Rosales, editores.

 Montiel, C., Sosa, L., Medrano, C. & Romero, D. (1997). Nematodos fitoparásitos en plantaciones de plátano (Musa AAB) de la margen izquierda del río Chana. Estado Zulia, Venezuela. Departamento Fitosanitario. Facultad de Agronomía. Universidad de Zulia. Venezuela. pp. 245-251.

 Pérez, A., Sánchez, E. & Fernández, E. (1999). Uso de Paecilomyces lilacinum en cultivo estático para el control de nematodos parásitos en plátano en el sistema de riego por goteo. Centro Agrícola, 26(1), 5-10.

 Rivillas, C. A. (1995). The effects os arbuscular mycorrhizal fungi on two different coffe varieties from Colombia and their bichemical detection in roots. Kent, University of Kent. Research School Of Biosciences. (Tesis: Magister Science).

 ________. (2003). Las micorrizas arbusculares en el cultivo del café. En Enfermedades del cafeto en Colombia (pp. 64-74). Chinchiná, Colombia: Cenicafé.

 Rodríguez, M. (1995). Microorganismos libres fijadores de nitrógeno. En Ferrera-Cerrato R. & J. Pérez M. (Eds.). Agromicrobiología: Elemento útil en la agricultura sustentable (pp. 105-126). Montecillo, México: Colegio de
Postgraduados.

 Sánchez, M. (2007). Las Endomicorrizas: Expresión bioedáfica de importancia en el trópico. Palmira: Universidad Nacional de Colombia.

 Sarah, J. L., Pinochet, J. & Stanton, J. (1996). El nematodo Barrenador del Banano Radopholus Similis Cobb. Plagas de Musa - Hoja Divulgativa No.1.

 Sieverding, E. (1991). Vesicular-arbuscular mycorrhiza management in tropical agrosystems. Eschborn (Alemania), GTZ. 371p. Ing. (Schriftenreihe der GTZ No. 224).

 Smith, S. E. & Read, D. J. (1997). Mycorrhizal symbiosis. 2 ed. San Diego (Estados Unidos): Academic Press.

 Ulloa, M. & Hanlin, R. T. (2001). Illustrated dictionary of mycology. St. Paul (Estados Unidos): American Phytopatholocial Society.

 Vergara, D., Guzmán P., O. A. & Leguizamón, J. E. (2012). Efecto In vitro de Purpureocillium lilacinum (Thom) Luangsa-Ard et al. y Pochonia chlamydosporia (Goddard) Zare y Gams sobre el nematodo barrenador Radopholus similis (Cobb) Thorne. Agronomía, 20(2), 25-36.