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Autores/as
Sandra Bibiana Aguilar M
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José Fernando Kogson Q.
Carlos Felipe Barrera Sánchez
Resumen
El cultivo de Annona muricata en Colombia registra una producción anual de 55.740 ton/año. Sus usos principales son como fruta fresca y la obtención de subproductos para uso medicinal. La comprensión de la distribución de la variación genética en las poblaciones puede tener implicaciones importantes en los estudios de conservación y en el manejo de los cultivares. En el presente estudio se visualiza de manera preliminar la situación de la diversidad genética de A. muricata en una región de Colombia. Objetivos: conocer la diversidad genética de A. muricata en Colombia, e identificar cultivares base para el establecimiento preliminar de un programa de mejoramiento genético. Alcance: se registraron 30 alelos con un promedio de 1,84 alelos por locus. El PIC (0,875) se consideró con alto poder informativo. El análisis AMOVA permitió una diferenciación de la variabilidad genética entre poblaciones del 15% y entre los individuos del 74%. La población reveló deficiencia de heterocigotos (Ho= 0,449 y He= 0,342). Se obtuvo un 100% de Loci (plural de locus) polimórficos para el municipio de Palestina. Los agrupamientos permitieron la conformación de tres grupos principales que comparten aproximadamente un 57% de su genoma. Metodología: se evaluaron 102 materiales de A. muricata colectados en los departamentos de Caldas y Risaralda, mediante 16 marcadores moleculares SSR. Los análisis estadísticos y las agrupaciones se realizaron mediante los programas GenAlEx6 y NTSYS 2.02i. Conclusiones: la discriminación de los 106 materiales de guanábana con los marcadores SSR reveló deficiencia de heterocigotos, sin embargo fue posible la identificación preliminar de cultivares promisorios basados en la selección individual de materiales portadores de riqueza alélica, y aquellos materiales que reportaron una menor similitud en las agrupaciones. La información generada de esta investigación podría ser insumo para el inicio del establecimiento de un programa de mejoramiento genético para la especie en Colombia.
Palabras clave:
Citas
Agronet. (2022). Reporte: área, producción y rendimiento nacional por cultivo. https://www.agronet.gov.co/estadistica/Paginas/home.aspx?cod=1
Arnold, C. M., Rossetto, J., Mcnally, J. y Henry, R.J. (2002). The application of SSRs characterized for grape (Vitis vinifera) to conservation studies in Vitaceae. Am. J. Bot, 89, 22-28.
Dayanandan, S., Bawa, K. S. y Kesseli, R. (1997). Conservation of microsatellites among tropical trees (Leguminosae). Am. J. Bot, 84, 1658-1663.
Doyle, J. J. y Doyle, J. L. (1990). Isolation of Plant DNA From Fresh Tissue. Focus, 12, 13-15.
Escribano, P., Viruel, M. A. y Hormaza, J. I. (2004). Characterization and cross-species amplification of microsatellite markers in cherimoya (Annona cherimola Mill., Annonaceae). Ecol. Mol Notes, 4, 746-748.
Escribano, P., Viruel, M. A. y Hormaza, J. I. (2007). Molecular analysis of genetic diversity and geographic origin within an Ex-situ germplasm collection of cherimoya by using SSRs. Jashs, 132(3), 357-367.
Escribano, P., Viruel, M. A. y Hormaza, J. I. (2008). Development of 52 new Polymorphic SSR markers from cherimoya (Annona cherimola Mill.): transferability to related taxa and selection of a reduced set for DNA fingerprinting and diversity studies. Mol. Ecol. Resources, 8, 317-321.
Guarino, L. y Maxted, N. (1996). Complementary approaches to collecting plant genetic resources by national programs. Plant Genet. Resour. Newsl, 107,19-22.
Harlan, J. R. (30 de octubre de 2009). Crops and Man. American Journal of Alternative Agriculture, 8(1), 47-48. https://doi.org/10.1017/S0889189300004938
Hilge-Rodríguez, I. (2008). Diversidad genética del árbol Annona purpurea Moc. & Sessé ex Dunal (Annonaceae) utilizando microsatélites como marcadores moleculares (tesis de pregrado, Ciudad Universitaria “Rodrigo Facio” de Costa Rica). http://biologia.ucr.ac.cr/TesisLic/IrenaHilje.pdf
Kessler, J. A. (1993). Annonaceae: contributions of Spinger-Verlag. En K. Kubitzi, J. G. Rohwer y V. Brittrich (Eds.), Flowering Dicotyledons II. The families and genera of vascular plants (pp. 93-104).
Marshall, D. R. y Brown, D. H. (1975). Optimum sampling strategies in genetic conservation. En O. H. Frankel y J. G. Hawkes (Eds.), Crop genetic resources for today and tomorrow (pp.53-80).
Márquez-Cardozo, C. J. (2009). Caracterización Fisiológica fisicoquímica reológica nutracéutica estructural y sensorial de la guanánbana (Annona muricata L. cv elita) (tesis de doctorado). Universidad Nacional de Colombia. https://bit.ly/39QYa2j
Marulanda, M. L., López, A. M. y Aguilar, S. B. (2007). Genetic diversity of wild and cultivated Rubus species in Colombia using AFLP and SSR markers. Crop Breed Appl Biotechnol, 7, 242-252.
Mix, C., Arens, P. F., Ouborg, N. J. y Smulders, M. J. (2004). Isolation and characterization of highly polymorphic microsatellite markers in Hypochaeris radicata (Asteraceae). Mol. Ecol. Notes, 4, 656-658.
Nybom, H. (2004). Comparison of different nuclear DNA markers for estimating intraspecific genetic diversity in plants. Mol. Ecol, 13.
https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2004.02141.x
Otero, A., Casas, A., Hamrick, J. L. y Cruse, J. (2005). Genetic variation and evolution of Polaskia chichipe (Cactaceae) under domestication in the Tehuacán Valley, Central México. Mol Ecol, 14, 1603-1611.
Peakall, R. y Smouse, P. E. (2006). GENALEX 6: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research. Mol Ecol Notes, 6, 288-295.
Piñero, D., Barahona, A., Eguiarte, L., Rocha, A. y Salas, R. (Eds.). (2008). La variabilidad genética de las especies: aspectos conceptuales y sus aplicaciones y perspectivas en México. https://bit.ly/3yeJ5B0
Popenoe, J. (1975). Status of Annona culture in South Florida. Annual Meeting Florida State Horticultural Society (FSHS), 87, 342-344.
Reina, C. E., Rivera, C. M. y Bonilla, F. (Eds.). (1996). Manejo postcosecha y evaluación de la calidad para la guanábana (Anonna muricata L). que se comercializa en la ciudad de Neiva. https://bit.ly/3QI9kao
Rohlf, F. J. (Ed.). (1997). NTSYSpc Numerical Taxonomy and Multivariate Analysis System version 2.2 Getting Started Guide. https://bit.ly/3yboFZL
Salazar, C., Vargas, C. F. y Salvador, J. (2010). Estructura y diversidad genética de Annona squamosa en huertos familiares mayas de la península de Yucatán. Mex Biodivers, 81, 759-770.
Schnell, R. J., Olano, T., Quintanilla, W. E. y Meerow, A. W. (2005). Isolation and characterization of 15 microsatellite loci from mango (Mangifera indica L.) and cross-species amplification in closely related taxa. Mol. Ecol. Notes, 5, 625-627.
Selkoe, K. A. y Toonen, R. J. (2006). Microsatellites for ecologists: a practical guide to using and evaluating microsatellite markers. Ecol. Letters, 9, 615-629.
Sneath, P. H. A. y Sokal, R. R. (Eds.). (1973). Numerical Taxonomy: the principles and practice of numerical classification. San Francisco, Freeman. https://archive.org/details/numericaltaxonom0000snea/page/n5/mode/2up
Squirrell, J., Hollingsworth, P. M., Woodhead, M., Russell, J., Lowe, A. J., Gibby, M. y Powell, W. (2003). How much effort is required to isolate nuclear microsatellites from plants? Mol. Ecol, 12, 1339-1348.
Talamantes, C. A., Cortés, M., Balois, R., López, G. G. y Palomino, Y. A. (2020). Análisis molecular de la diversidad genética en Guanábana (Annona muricata l.) mediante marcadores SRAP. Revista fitotec. Mex, 42(3), 209-214.
Wright, S. (1951). The genetical structure of populations. Annals of Eugenics, 15, 323-354.
Zaghloul, M. S., Hamrick, J. L., Moustafa, A. A., Kamel, W. M. y El-Ghareeb, R. (2006). Genetic diversity within and among Sinai populations of three Ballota species (Lamiaceae). J. Heredity, 97, 45-54.
Zucchi, M. I., Brondani, R., Pinheiro, J. B., Chaves, L. J., Coelho, A. G. y Vencovsky, R. (2003). Genetic structure and gene flow in Eugenia dysenterica DC in the Brazilian Cerrado utilizing SSR markers. Revista Gen. Mol. Biol, 26, 449-457.
