DOI: 10.17151/vetzo.2019.13.1.5
Cómo citar
Salazar J. J., Urrea Uribe G., Ramírez IA J. D., & Mejía L. M. (2019). Metaanálisis : Efecto inmunomodulador sobre la IgA, generado por los β-glucanos 1,3/1,6 (Sacharomices cerevisiae), en pollos de engorde desafiados con Salmonella entérica. Revista Veterinaria y Zootecnia (On Line), 13(1), 68-82. https://doi.org/10.17151/vetzo.2019.13.1.5

Autores/as

John Jairo Salazar
vetzootec@ucaldas.edu.co
Guillermo Urrea Uribe
vetzootec@ucaldas.edu.co
Juan David Ramírez IA
vetzootec@ucaldas.edu.co
Luis Miguel Mejía
Universidad del Quindío
vetzootec@ucaldas.edu.co

Resumen

Introducción: Los β-glucanos 1,3/1,6 provenientes de la pared de la levadura Sacharomyces cereviciae son empleados como inmunomoduladores en pollos de engorde pero no existen datos que soporten su uso en avicultura. Objetivo: Hacer un metanailisis de los estudios que evaluan el efecto inmunomodulador de los β- glucanos provenientes de S. cereviciae y su acción sobre la secreción de la inmunoglobulina A (sIgA) en pollos desafiados con Salmonella enteritidis. Métodos: Se realizó un metaanálisis sobre los estudios reportados en las bases de datos: PUB MED, MED LINE y SCIENCE DIRECT, entre los años 2000- 2018. Los datos fueron evaluados con el programa QUALITY CONSORT. Resultados: El proceso de revisión sistemática y metaanálisis arrojó 30 estudios, de estos se eliminaron 26 trabajos que no cumplían con los requisitos. Unicamente se analizaron 4 estudios que incluyeron 356 pollos. El ANOVA de la gran media demostró un aumento significativo de la sIgA de pollos tratados con una dosis de 25mg/Kg de β-glucanos en comparación con pollos control. Además, se observó una gran variación en la producción de IgA en dosis que fluctuaban entre 25-100 mg/Kg. Así mismo, al comparar dichas dosis y su efecto con el tiempo de uso, se observó que a los 15 días de uso continuo de los β-glucanos la secreción de sIgA se mantenía estable. Conclusiones: La suplementación en la dieta con β-glucanos 1,3/1,6 puede incrementar la secreción de sIgA cuando se usa una dosis de 25 mg/Kg por un periodo de 21 días en aves desafiadas con Salmonella enteritidis.

Berg, R.D. Bacterial translocation from the gastrointestinal tract. Trends Microbiol, 3:149-154, 1995.

Catalioto, R.M.; Maggi, C.A.; Giuliani, S. Intestinal epithelial barrier dysfunction in disease and possible therapeutical interventions. Curr. Med. Chem. 18:398- 426, 2011.

Chae, B.J.; Lohakare, J.D.; Moon, W.K. et al. Effect of supplementation of ß-glucan on the growth performance and immunity in broilers. Res. Vet. Sci. 80:291-298, 2006.

Chen, K.L.; Weng, B.C.; Chang, M-T. et al. Direct enhacement of the phagocytic and bactericidal capability of abdominal macrophaghes of chickens by β-1,3/1,6 glucans. Poultry science, 87: 2242-2249, 2006.

Cheung, N.-K.; Modak, S.; Vickers, A. et al. Orally administered ß-glucans enhance anti-tumor effects of monoclonal antibodies. Cancer Immunol. Immunother, 51: 557-564, 2002.

Cox, C.M.; Stuard, C.H.; Kim, S. et al. Immune responses to dietary beta glucan in broiler chicks during an Eimeria challenge. Poult. Sci, 89: 2597-260, 2010ª.

Ducoing A.M. Diseño estadístico de experimentos. Estadística para veterinarios y zootecnistas NEWTON. PP 207, 2016.

Glynn, M.K.; Bopp, C.; Dewitt, W. et al. Emergence of multidrugresistantSalmonella enterica serotype Typhimurium DT104 infections in the United States. New England Journal of Medicine, 338, 1333-1338, 1998.Griffin, A.J.; McSorley, S.J. Development of protective immunity to Salmonella, a mucosal pathogen with a systemic agenda. Mucosal Immunol, 4:371-382, 2011.

Grimont, P.A.D.; Grimont, F.; Bouvet, P. Taxonomy of the genus Salmonella. In: Wray, A. and Wray, C. (eds.) Salmonella in domestic animals. CAB, International, Oxford, England, p. 1-17, 2000.Guo, Y.; Ali, R.A.; Qureshi, M.A. The influence of ß-glucan on immune responses in broiler chicks.Immupharmacol. Immunotoxicol, 3:461-472, 2003.

Guo, Y.; Ali, R.A.; Qureshi, M.A. The influence of beta glucan on immune responses in broiler chicks. Immunopharma col Immunotoxicol, 25:461-472, 2003.

Huff, G.R.; Huff, W.E.; Rath, N.C. et al. Limited treatment with beta-1,3/1,6-glucan improves production values of broiler chickens challenged with Escherichia coli. Poult. Sci, 85:613-618, 2006.

Instituto Nacional de Salud. Perfil de riesgo Salmonella spp. (no tifoideas) en pollo entero y en piezas. Ministerio de Protección Social, p. 68, 2011.

Li, X.H.; Chen, Y.P.; Cheng. Y.F. et al. Effect of yeast cell power with different particle sizes on the growth performance. Serum metabolites. Immunity and oxidative status of broiler. Animal Feed Science and Thechnology. p. 81-89, (2015).

Lowry, V. K.; Farnell, M.B.; Ferro, P.J. et al. Purified ß-glucan as an abiotic feed additive up-regulates the innate immune response in immature chickens againstSalmonella enterica serovar Enteritidis. Int. J. Food Microbiol, 98:309- 318, 2005.

Manners, D.J.; Masson, A.J.; Patterson, J.C. et al. The structure of a beta-(1–6)-dglucan from yeast cell walls. Biochem. J, 135:31-36, 1973.

Mantis, N.J.; Rol, N.; Corthesy, B. Secretory IgA’s complex roles in immunity and mucosal homeostasis in the gut. Mucos Immunol, 4:603-611, 2011.

Mead, P.S.; Slutsker, L.; Dietz, V. et al. Food-related illness and death in the United States. Emerging and Infection Diseases, 5, 607-625, 1999).

Remus, A.L.; Hatchild, I.; Andretta, M. Kipper. A Meta Analysis of the feed intake and grow performance of broiler chickens challenged of bacterials. Poultry Science, 93:1149-1158, 2014.

Shao, Y.; Guo, Y.; Wang, Z. Yeast D Glucan induced microbial peptide Expression against Salmonella infection. Poult. Sci, 92, 1764-1773, 2013.

Soltanian, S.; Stuyven, E.; Cox, P et al. Beta-glucans as immunostimulant in vertebrates and invertebrates. Crit. Rev. Microbiol. 35:109-138, 2009.

Tsukita, S.; Furuse, M.; Itoh, M. Multifunctional strands in tight junctions. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2:285-293, 2001.

Ulluwishewa, D.; Anderson, R.C.; McNabb, W.C. et al. Regulation of tight junction permeability by intestinal bacteria and dietary components. J.Nutr. 141:769- 776, 2011.

Uzzau, S.; Brown, D.J.; Wallis, T. et al. Host adapted serotypes of Salmonellaenterica. Epidemiology and Infection, 125, 229-255, 2000.Vandeplas, S.;

Dubois, R.; Dauphin, Y. et al. Salmonella in chicken: Current and developing strategies to reduce contamination at farm level. J. Food Prot, 73:774–785.

Volman, J.J.; Ramakers, J.D.; Plat, J. Dietary modulation of immune function by betaglucans. Physiol. Behav, 94:276-284, 2008.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.
Sistema OJS - Metabiblioteca |