DOI: 10.17151/bccm.2025.29.2.12
Cómo citar
Cardona Avila, J. D. (2025). Control de proliferación masiva de hongos sobre colección zoológica de referencia científica. Boletín Científico Centro De Museos, Museo De Historia Natural, 29(2), 233–254. https://doi.org/10.17151/bccm.2025.29.2.12

Autores/as

Juan David Cardona Avila
Universidad ICESI 
juancardona2501@outlook.com
https://orcid.org/0009-0008-9501-3184
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Resumen

El estudio se enfocó en controlar una plaga fúngica en la colección zoológica del Museo Departamental de Ciencias Naturales, Cali, ocasionada por la falta de instalaciones adecuadas para la conservación de especímenes y una zona de cuarentena. Se recolectaron 68 muestras de ejemplares infectados y ocho muestras ambientales para caracterizar y purificar los morfotipos predominantes. De estas muestras, 10 presentaron crecimiento en laboratorio, incluyendo seis superficies y 10 ambientes. Se identificaron 17 colonias predominantes, que se purificaron y agruparon en 15 morfotipos. Tres de estos morfotipos destacaron por su frecuencia y carga microbiana, identificándose como Peniophora albobadia, Aspergillus sydowii y Penicillium commune. Con estos hongos se realizó una prueba de sensibilidad, en la que se evaluaron cinco desinfectantes comerciales por duplicado a cuatro concentraciones de 0,2, 0,4, 0,6, y 0,8 % para determinar su eficacia contra la plaga: Timsen 2125M P40®, Simple Green D Pro 5®, Divosan Forte VT6, KlaxinnTabs DETCLORK 500 y Pentamon. De los cinco productos, KlaxinnTabs DETCLORK 500 a 0,8 % mostró el mejor rendimiento, pero su indisponibilidad para la aplicación a escala de fumigación condujo a la elección de Simple Green D Pro 5®, que redujo la carga microbiana ambiental en un 40 % y disminuyó el número de muestras de superficie que proliferaron en laboratorio de seis a dos. Estos resultados sugieren un potencial efectivo en el control de la plaga con el producto Simple Green D Pro 5®, pero podría mejorar si se empleara KlaxinnTabs DETCLORK 500 por aspersión y se implementara una zona de cuarentena para el tratamiento de especímenes infectados.

Alker, A. P., Smith, G. W., y Kim, K. (2001). Characterization of Aspergillus sydowii (Thom et Church), a fungal pathogen of Caribbean sea fan corals. Hydrobiologia, 460, 105–111. https://doi.org/10.1023/A:1013145524136

Bika, R., Copes, W., y Baysal-Gurel, F. (2021). Comparative performance of sanitizers in managing plant-to-plant transfer and postharvest infection of Calonectria pseudonaviculata and Pseudonectria foliicola. Plant Disease, 105(10), 2809–2821. https://doi.org/10.1094/PDIS-03-21-0481-RE

Choi, Y.-H., Huh, D.-A., Lee, J.-Y., Choi, J. Y., y Moon, K. W. (2021). Verification and optimization of an ultra-low volume (ULV) sprayer used for the inactivation of indoor total bacteria. Applied Sciences, 11(8), 3713. https://doi.org/10.3390/app11083713

Copes, W. E., y Ojiambo, P. S. (2023). A systematic review and quantitative synthesis of the efficacy of quaternary ammonium disinfectants against fungal plant pathogens. Plant Disease, 107(2), 480–492. https://doi.org/10.1094/PDIS-09-21-2018-RE

Cox, C. S., y Wathes, C. M. (1995). Bioaerosols in the environment. En C. S. Cox y C. M. Wathes (Eds.), Bioaerosols Handbook:Sampling, Analysis and Control (pp. 11–14). Lewis Publishers.

De Lima, J. T. M., y de Souza Carvalho, I. (2020). Geological or cultural heritage? The ex situ scientific collections as a remnant of nature and culture. Geoheritage, 12(1), 3. https://doi.org/10.1007/s12371-020-00448-5252 Juan David Cardona Avila

Delgadillo, I., y Góngora, F. (2009). Colecciones biológicas: estrategias didácticas en la enseñanza-aprendizaje de la biología. Revista Bio-grafía, 2(3), 131-140. https://doi.org/10.17227/20271034.vol.2num.3bio-grafia131.140

De Moraes Borba, C., y Rodrigues, K. F. (2000). Viability and sporulating capability of Coelomycetes preserved under a range of different storage regimes. Revista Iberoamericana de Micología, 17, 142-145. https://www.reviberoammicol.com/2000-17/142145.pdf

Diblasi, L., Arrighi, F., Silva, J., Bardón, A., y Cartagena, E. (2015). Penicillium commune metabolic profile as a promising source of antipathogenic natural products. Natural Product Research, 29(23), 2181–2187. https://doi.org/10.1080/14786419.2015.1007457

Dilmaçünal, T., y Kuleaşan, H. (2018). Novel strategies for the reduction of microbial degradation of foods. En Mihai Grumezescu, A., y Holban, A.M. (Eds.), Food Safety and Preservation (pp. 481–520). Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-814956-0.00016-0

Demjanová, S., Jevinová, P., Pipová, M., y Regecová, I. (2020). Identification of Penicillium verrucosum, Penicillium commune, and Penicillium crustosum isolated from chicken eggs. Processes, 9(1), 53. https://doi.org/10.3390/pr9010053

Fernandes, S., Simões, M., Dias, N., Santos, C., y Lima, N. (2012). Fungicidal activity of microbicides. En Fraise, A., Maillard, J.Y., y Sattar, S.A. (Eds.), Russell, Hugo y Ayliffe’s Handbook of Microbiology (pp. 142–154). Wiley-Blackwell. https://doi.org/10.1002/9781118425831.ch7

Gourama, H., y Bullerman, L. B. (1995). Relationship between aflatoxin production and mold growth as measured by ergosterol and plate count. Lebensmittel-Wissenschaft und -Technologie, 28(2), 185–189. https://doi.org/10.1007/BF01141329

Guevara-Suarez, M., Sutton, D. A., Cano-Lira, J. F., García, D., Martin-Vicente, A., Wiederhold, N., Guarro, J., y Gené, J. (2016). Identification and antifungal susceptibility of Penicillium-like fungi from clinical samples in the United States. Journal of Clinical Microbiology, 54(8), 2155–2161. https://doi.org/10.1128/JCM.00960-16

International Society for Biological and Environmental Repositories. (2008). Collection, storage, retrieval and distribution of biological materials for research. Cell Preservation Technology, 6(1), 3–58. https://doi.org/10.1089/cpt.2008.9997

Ibrahim, S., Mohamed, S., Alsaadi, B., Althubyani, M., Awari, Z., Hussein, H., Aljohani, A., Albasri, J., Faraj, S., y Mohamed, G. (2023). Secondary metabolites, biological activities, and industrial and biotechnological importance of Aspergillus sydowii. Marine Drugs, 21(8), 441. https://doi.org/10.3390/md21080441

Jacomé, A. M., y Campos, S. (2022). Digitalización y verificación de la información del orden Chiroptera que reposa en la colección de referencia del Museo de Vertebrados de la Universidad de Panamá [Trabajo de pregrado, Universidad de Panamá]. https://up-rid.up.ac.pa/6390/1/ana_jacome.pdf

Jiménez-Gómez, I., Valdés-Muñoz, G., Moreno-Ulloa, A., Pérez-Llano, Y., Moreno-Perlín, T., Silva-Jiménez, H., Barreto-Curiel, F., Sánchez-Carbente, M. del R., Folch-Mallol, J. L., Gunde-Cimerman, N., Lago-Lestón, A., y Batista-García, R. A. (2022). Surviving in the brine: A multi-omics approach for understanding the physiology of the halophile fungus Aspergillus sydowii at saturated NaCl concentration. Frontiers in Microbiology, 13, 840408. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.840408

Keene, S. (2006). Fragments of the world: Uses of museum collections. Routledge. https://doi.org/10.4324/9780080456416

Kerr, J. R. (1999). Bacterial inhibition of fungal growth and pathogenicity. Microbial Ecology in Health and Disease, 11(3), 129–142.
https://doi.org/10.1080/089106099435709

Ljaljevic-Grbic, M., Stupar, M., Vukojevic, J., Maricic, I., y Bungur, N. (2013). Molds in museum environments: Biodeterioration of art photographs and wooden sculptures. Archives of Biological Sciences, 65(3), 955–962. https://doi.org/10.2298/ABS1303955G

Maggi, O., Tosi, S., Angelova, M., Lagostina, E., Fabbri, A. A., Pecoraro, L., Altobelli, E., Picco, A. M., Savino, E., Branda, E., Turchetti, B., Zotti, M., Vizzini, A., y Buzzini, P. (2013). Adaptation of fungi, including yeasts, to cold environments. Plant Biosystems, 147(1), 247–258. https://doi.org/10.1080/11263504.2012.753135

Meineke, E. K., y Daru, B. H. (2021). Bias assessments to expand research harnessing biological collections. Trends in Ecology y Evolution, 36(12), 1071–1082. https://doi.org/10.1016/j.tree.2021.08.003

Nakasone, K. K., Peterson, S. W., y Jong, S.-C. (2004). Preservation and distribution of fungal cultures. En Biodiversity of Fungi: Inventory and Monitoring Methods (pp. 37–47). Elsevier Academic Press. https://research.fs.usda.gov/treesearch/7115

Rose, C. L., Hawks, C. A., y Genoways, H. H. (1995). Storage of natural history collections: A preventive conservation approach. Society for the Preservation of natural History Collections.

Rose, C. L., Hawks, C. A., y Waller, R. (2019). A preventive conservation approach to the storage of collections. En L. Elkin y C. A. Norris (Eds.), Preventive Conservation: Collection Storage (pp. 43-55). Society for the Preservation of Natural History Collections. https://www.researchgate.net/publication/335682131_A_Preventive_Conservation_Approach_to_the_Storage_of_Collections

Senanayake, I.C, Rathnayaka, AR., Marasinghe, D.S., Calabon, M.S., Gentekaki, E., Lee, H.B., Hurdeal, V.G., Pem, D., Dissanayake, L.S., Wijesingke, S.N., Bundhun, D., Nguyen, T.T., Goonasekara, I.D., Abeywickrama, P.D., Bhunjun, C.S., Jayawardena, R.S., Wanasinghe, D.N., Jeewon, R., Bhat, D.J., y Xiang, M.M. (2020). Morphological approaches in studying fungi: Collection, examination, isolation, sporulation and preservation. Mycosphere, 11(1), 2678–2754. https://doi.org/10.5943/mycosphere/11/1/20

Selbmann, L., Egidi, E., Isola, D., Onofri, S., Zucconi, L., de Hoog, G. S., Chinaglia, S., Testa, L., Tosi, S., Balestrazzi, A., Lantieri, A., Compagno, R., Tigini, V., y Varese, G. C. (2013). Biodiversity, evolution and adaptation of fungi in extreme environments. Plant Biosystems, 147(1), 237–246. https://doi.org/10.1080/11263504.2012.753134

Simple Green. (2008). SIMPLE GREEN® D PRO 5 Desinfectante – Limpiador – Antiséptico – Fungicida – Antimoho – Virucida* – Desodorante. Simple Green® d Pro5. 1 Gal. - Simple Green

Siqueira, J. P. Z., Sutton, D. A., García, D., Gené, J., Thomson, P., Wiederhold, N., y Guarro, J. (2016). Species diversity of
Aspergillus section Versicolores in clinical samples and antifungal susceptibility. Fungal Biology, 120(11), 1458–1467. https://doi.org/10.1016/j.funbio.2016.02.006

Speranza, M., Gutiérrez, A., del Río, J. C., Bettucci, L., Martínez, Á. T., y Martínez, M. J. (2009). Sterols and lignin in Eucalyptus globulus wood: Spatial distribution and fungal removal as revealed by microscopy and chemical analyses. Holzforschung, 63(3),362–370. https://doi.org/10.1515/HF.2009.041

Simmons, J. E., y Muñoz-Saba, Y. (2005). Cuidado, manejo y conservación de las colecciones biológicas. Universidad Nacional de Colombia.

Shabbir, A., Khan, M. A., Khan, A. M., y Iqbal, M. (2007). Fungal biodeterioration: A case study in the zoological museum of the Punjab University. Journal of Animal and Plant Sciences, 17(4), 90–92.

Sluys, R. (2021). Attaching names to biological species: The use and value of type specimens in systematic zoology and natural history collections. Biological Theory, 16(1), 49–61. https://doi.org/10.1007/s13752-020-00366-3

Strasser, B. J. (2011). The experimenter’s museum: GenBank, natural history, and the moral economies of biomedicine. ISIS, 102(1), 60-96. https://doi.org/10.1086/658657

Takahata, Y., Hiruma, M., Sugita, T., y Muto, M. (2008). A case of onychomycosis due to Aspergillus sydowii diagnosed using DNA sequence analysis. Mycoses, 51(2), 170–173. https://doi.org/10.1111/j.1439-0507.2007.01458.x

Tian, J., Wu, B., Chen, H., Jiang, N., Kang, X., y Liu, X. (2017). Patterns and drivers of fungal diversity along an altitudinal gradient on Mount Gongga, China. Journal of Soils and Sediments, 17(12), 2856-2865. https://doi.org/10.1007/s11368-017-1701-9

Troncozo, M. I., Figoli, C. B., Franco, M. E. E., Mirífico, M. V., Bosch, A., Rajchenberg, M., Balatti, P. A., y Saparrat, M. C. N. (2020). Biotransformation of grape pomace from Vitis labrusca by Peniophora albobadia LPSC #285 (Basidiomycota). Anais da Academia Brasileira de Ciências, 92(1). https://doi.org/10.1590/0001-3765202020181174

Trujillo-Luna, B. R., y González-Vallejo, N. E. (2006). Equinodermos de la colección de referencia de bentos costero de Ecosur. Universidad y Ciencia, 22(1), 83–88. https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=2108723

Zaitseva, N. (2009). A polysaccharide extracted from Sphagnum moss as an antifungal agent in archaeological conservation [Trabajo de maestría, Queen´s University]. https://www.collectionscanada.gc.ca/obj/thesescanada/vol2/002/MR65063.PDF?is_thesis=1&oclc_number=808922483

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