How to Cite
Chaves Moreno, L. C. ., Chacón Rodríguez, L. ., Lozada Morales, J. ., Motta Delgado, P. A. ., & Murcia Ordoñez, B. . (2012). Evaluation in cachama (Piaractus brachypomus) of induced reproduction of with buserelin acetate. Revista Veterinaria Y Zootecnia (On Line), 6(1), 47–55. Retrieved from https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/vetzootec/article/view/4425

Authors

Luis Carlos Chaves Moreno
lucachamos@gmail.com
Leonardo Chacón Rodríguez
sincorreo@ucaldas.edu.co
Jeremías Lozada Morales
sincorreo@ucaldas.edu.co
Pablo Andrés Motta Delgado
sincorreo@ucaldas.edu.co
Betselene Murcia Ordoñez
sincorreo@ucaldas.edu.co

Abstract

ABSTRACT: The induced reproduction response of white cachama (Piaractus brachypomus) with buserelin acetate was evaluated through two bioassay which was carried out with eight females distributed at random in four treatments: A, B, C with 2.4, 2.6 and 2.8 mcg/kg of buserelina acetate respectively and D with 5 mg/kg of carp hypophysis extract (CHE) applied in doses of 10% (0 h) 40% (24 h) and 50% (12 h following), as well as two males induced with 1 mcg/kg of buserelin acetate and 1 mg/kg of CHE, applied in the second dose of the females. For the analysis of results an ANOVA descriptive statistic was carried out with P<0.05. In the first bioassay, only three  females of the treatments B, C and D responded satisfactorily to the induction with a production of 660,000, 100,800 and 730,000 oocytes with a rate of 75, 40 and 82% fertilization and an appearance rate of 68, 30 and 73% respectively. In the second bioassay three females of the B, C and D treatments responded with a production of 612,000, 96,000 and 750,000 oocytes, with a fertilization rate of 70, 32 and 74% and an appearance rate of 60, 23 and 65% respectively. It was concluded that the induction of the reproduction of Piaractus brachypomus is possible by means of the administration of 2.6 to 2.8 mcg/kg of buserelin acetate

Álvarez-Lajonchère, L.; Hernández Molejón, O.G. Producción de juveniles de peces estuarinos para un centro en América Latina y el Caribe: Diseño, operación y tecnologías. Baton Rouge, USA: The World Aquaculture Society, 2001. 424p.

Alvariño, J.; Zanuy, S.; Prat, F.; Carrillo, M.; Mañanos, E. Stimulation of ovulation and steroid secretion by LHRHa injection in the bass (Dicentrarchus labrax): effect of time of day. Aquaculture, v.102, p.177-186, 1992.

Arias, A.J.J.; Hernández, R.J.L. Efectos del extracto hipofisiario de carpa común y el análogo de la GnRH sobre la maduración final del oocito y el desove de la cachama negra (Colossoma macropomum). Revista científica, FCV-LUZ, v.19, n.5, p.486-494, 2009.

Atencio-García, J. Producción de alevinos de peces migratorios continentales en Colombia. II Congreso Iberoamericano Virtual de Acuicultura –CIVA–, p.263-270, 2003.

Da Silva, A.B.; Vinatea, J.E.; Alcántara, F. Manual de reproducción de peces Colossoma (Pacú y tambaquí) Tarapoto. FAO. Doc. Tec. Pesca FI AB491 Version 5. San Martín, Perú. 1988. p.245. http://www.fao.org/docrep/field/003/ AB491S/AB491S00.htm

Da Silva, M.C.; Pinheiro, J.L. Cultivo de Colossoma. CODEVASF. En: Hernández, A. (Ed.). Cultivo de Colossoma. 1. ed. Bogotá, Colombia: Editorial Guadalupe, 1989. P.260-275.

Garza, G.; Rodríguez, M. Técnicas para la Reproducción inducida de Cyprinus carpio specularis. México. Universidad Autónoma Metropolitana, 1985. 10p.

González, J.; Guerrero, H.; Cáseres, G.; Marcano, D. Reproducción inducida de cachama Colossoma macropomum con extracto hipofisiario y un análogo de la hormona liberadora de gonadotropina (LHRH-A). Acta Científ. Venez., v.42, p.229-231, 1991.

Guerra, H. Cultivo y procesamiento de peces nativos: una propuesta para la Amazonia peruana. Instituto de Investigaciones de la Amazonia Peruana, Programa de Ecosistemas Acuáticos −PEA−.Iquitos, Perú.2000. p.10-20.

Haddy, J.; Pankhurst, A. The efficacy of exogenous hormones in stimulating changes in plasma steroids and ovulation in wild black bream Acanthopagrus butcheri is improved by treatment at capture. Aquaculture, v.191, p.351-366, 2000.

Hahn von-H.; C.M.; Grajales, A. Reproducción inducida de especies ícticas de alto valor biológico y comercial, Dorada (Brycon moorei, Dahl, 1995) y Bocachico (Prochilodus reticulatus Staindachner, 1878) en la estación piscícola, Universidad de Caldas, Caldas, Colombia. Manizales: Programa de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de Caldas, 2004. 32p.

Ihering, R.V.; Azevedo, P. A curimatã dos açudes nordestinos Prochilodus argenteus. Arch. Inst. Biol., São Paulo, v.5, p.227-284, 1934.

Martino, G.C. Contribución al diagnóstico del desarrollo gonadal para la inducción de Cachama Colossoma macropomum). II Congreso Iberoamericano Virtual de Acuicultura. 2003. p.217-222.

Mata, E.; Rosas, J.; Velásquez, A.; Cabrera, T. Inducción hormonal al desove y descripción larval del corocoro Orthopristis ruber Cuvier (Pisces: Haemulidae). Revista de Biología Marina y Oceanografía, v.39, n.1, p.21-29, 2004.

Perdomo, D.; Useche, M.G.; González, M.E. Utilización de macroincubadoras en el proceso de reproducción inducida de cachamas (Colossoma macropomum) Pises Characidae. Rev. Científ. FCVLUZ, v.12, n.2, p.425-427, 2002.

Querales, D. Descripción del desarrollo embrionario y larval de Paralabraz dewegeri Metzelaar, 1919 (Pisces: Serranidae). Universidad de Oriente, Boca de Río, Venezuela, 2001. 71p. Trabajo para Licenciado.

Ponzetto, J.M.; Polaz, C.N.M.; Rocha, R.C.G.A.; Senhorini, J.A.; Porto-Foresti, F.; Foresti, F. Reprodução induzida de híbridos do gênero Brycon em cativeiro: potencialidades e ameaças à conservação das espécies nativas. In: AUGM Ambiente 2009 VI Congresso de Meio Ambiente da AUGM, São Carlos, SP. Anais de Eventos da UFSCar, v. 5, 2009.

Roldán, G.A.; Ramírez, J.J. Fundamentos de limnología neotropical. 2.ed. Medellín: Universidad de Antioquia, 2008. Secretaria Pro Tempore. Piscicultura amazónica con especie nativa, 2003. En: http://www. siamazonia.org.pe/Publicaciones/2003

Tamarú, C.; Carlstrom-Trick, C.; Fitzgerald, W.; Ako, H. Induced final maturation and spawning of the marbled grouper Epinephelus microdon captured from spawning aggregations in the Republic of Palau, Micronesia. Journal of the World Aquaculture Society, v.27, n.4, p.363- 372, 1996.

Voto B., J. Piscicultura amazónica con especies nativas. Instituto de Investigaciones de la Amazonía Peruana (IIAP), Perú, Lima, 2004. En: www.fao.org/ag/aGL/agll/rla128/iiap/ iiap1/texto.htm

Woynarovich, E.; Horváth, L. Propagación artificial de peces de aguas templadas: Manual para extensionistas. FAO. Doc. Téc. Pesca, v.201, p.1- 50, 1981.

Woynarovich, A.; Woynarovich, E. Guía Detallada para la Producción de Alevitos de Gamitada, Paco y Caraña. Lima, Perú: Edición Fondo Nacional de Desarrollo Pesquero – FONDEPES–, 1998. P.7-41.

Yaron, Z. Endocrine control of gametogénesis and spawning induction in the carp. Aquaculture, v.129, p.49-73, 1995.

Zaniboni-Filho, E.; Weingartner, M. Técnica de indução da reprodução de peixes migradores. Rev. Bras. Reprod. Anim., Belo Horizonte, v.31, n.3, p.367-373, 2007.

Downloads

Download data is not yet available.
Sistema OJS - Metabiblioteca |